Варианты генов HNF4A и HNF1A у пациентов с нарушениями метаболизма глюкозы и дислипидемией
https://doi.org/10.52727/2078-256X-2021-17-4-11-19
Аннотация
Диабет зрелого типа у молодых (MODY) – аутосомно-доминантно наследуемая форма моногенного диабета, диагностируемого в возрасте преимущественно до 35 лет и развивающегося вследствие дисфункции β-клеток поджелудочной железы. Мутации в генах HNF1A и HNF4A ассоциированы с развитием сахарного диабета подтипов HNF1A-MODY и HNF4AMODY соответственно. Для этих двух форм MODY характерно не только нарушение метаболизма глюкозы, но и развитие дислипидемии, обусловленное функцией генов транскрипционных факторов HNF1A и HNF4A. Целью данного исследования был генетический анализ ДНК двух пациенток молодого возраста с фенотипом MODY, дислипидемией и отягощенным семейным анамнезом. Материал и методы. Пробандам выполнено таргетное секвенирование. Таргетная панель включала кодирующие участки и прилегающие сайты сплайсинга MODYассоциированных генов: HNF4A, GCK, HNF1A, PDX1, HNF1B, NEUROD1, KLF11, CEL, PAX4, INS, BLK, KCNJ11, ABCC8 и APPL1. Результаты. Гетерозиготная однонуклеотидная делеция NM_000457.4:c.153del(3’rule) обнаружена у пробанда Р1 в гене HNF4A. У пробанда Р2 выявлен вариант однонуклеотидной делеции NM_000545.8:c.335del(3’rule) в гене HNF1A в гетерозиготном состоянии. Оба варианта локализуются в кодирующих частях гена, приводят к сдвигу рамки считывания и ранее в литературе и базах данных не описаны. Заключение. Принимая во внимание описанные фенотипические особенности пробандов, мы предполагаем, что варианты NM_000545.8:c.335del(3’rule) в гене HNF1A и NM_000457.4:c.153del(3’rule) гена HNF4A ассоциированы с развитием MODY у этих лиц. При верификации у пациентов типа диабета MODY-HNF1A и MODY-HNF4A необходимо контролировать показатели липидного профиля (содержание общего холестерина, холестерина липопротеинов низкой и высокой плотности, триглицеридов) и назначать соответствующую медикаментозную терапию.
Ключевые слова
Об авторах
Д. Е. ИванощукРоссия
Динара Евгеньевна Иванощук, младший научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики человека, ФИЦ ИЦиГ СО РАН; научный сотрудник лаборатории молекулярно-генетических исследований терапевтических заболеваний, НИИТПМ – филиал ИЦиГ СО РАН
630090, г. Новосибирск, просп. Академика Лаврентьева, 10
630089, г. Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1
А. К. Овсянникова
Россия
Алла Константиновна Овсянникова, д-р мед. наук, старший научный сотрудник лаборатории клинико-популяционных и профилактических исследований терапевтических и эндокринных заболеваний
630089, г. Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1
С. В. Михайлова
Россия
Светлана Васильевна Михайлова, канд. биол. наук, научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики человека
630090, г. Новосибирск, просп. Академика Лаврентьева, 10
Е. В. Шахтшнейдер
Россия
Елена Владимировна Шахтшнейдер, канд. мед. наук, руководитель сектора изучения моногенных форм распространенных заболеваний человека, ИЦиГ СО РАН; зам. руководителя филиала по научной работе, НИИТПМ – филиал ИЦиГ СО РАН
630090, г. Новосибирск, просп. Академика Лаврентьева, 10
630089, г. Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1
Э. С. Валеев
Россия
Эмиль Салаватович Валеев, студент, сектор геномных механизмов онтогенеза
630090, г. Новосибирск, просп. Академика Лаврентьева, 10
О. Д. Рымар
Россия
Оксана Дмитриевна Рымар, д-р мед. наук, зав. лабораторией клинико-популяционных и профилактических исследований терапевтических и эндокринных заболеваний
630089, г. Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1
П. С. Орлов
Россия
Павел Сергеевич Орлов, младший научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики человека, ИЦиГ СО РАН; научный сотрудник лаборатории молекулярно-генетических исследований терапевтических заболеваний, НИИТПМ – филиал ИЦиГ СО РАН
630090, г. Новосибирск, просп. Академика Лаврентьева, 10
630089, г. Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1
М. И. Воевода
Россия
Михаил Иванович Воевода, д-р мед. наук, проф., академик РАН
630090, г. Новосибирск, просп. Академика Лаврентьева, 10
Список литературы
1. Lachanse C.H. Practical aspects of monogenic diabetes: a clinical point of view. Can. J. Diabetes, 2016; 40: 368–375. doi:10.1016/j.jcjd.2015.11.004
2. Firdous P., Nissar K., Ali S., Ganai B.A., Shabir U., Hassan T., Masoodi S.R. Genetic testing of maturityonset diabetes of the young current status and future perspectives. Front. Endocrinol. (Lausanne), 2018; 9: 253. doi:10.3389/fendo.2018.00253
3. Anık A., Çatlı G., Abacı A., Böber E. Maturity-onset diabetes of the young (MODY): an update. J. Pediatr. Endocrinol. Metab., 2015; 28; 251–263. doi:10.1515/jpem-2014-0384
4. Pearson E.R., Pruhova S., Tack C.J., Johansen A., Castleden H.A., LumbP.J., Wierzbicki A.S., ClarkP.M., Lebl J., Pedersen O. Molecular genetics and phenotypic characteristics of MODY caused by hepatocyte nuclear factor 4alpha mutations in a large European collection. Diabetologia, 2005; 48: 878–885. doi:10.1007/s00125-005-1738-y
5. Воевода М.И., Иванова А.А., Шахтшнейдер Е.В., Овсянникова А.К., Михайлова С.В., Астракова К.С., Воевода С.М., Рымар О.Д. Молекулярная генетика MODY. Терапевтический архив, 2016; 88 (4): 117–124. doi:10.17116/terarkh2016884117-124
6. Sambrook J. Russell D.W. Purification of nucleic acids by extraction with phenol: Chloroform. Cold Spring Harb. Protoc., 2006; 2006: 4455. doi:10.1101/pdb.prot4455
7. Stenson P.D., Ball E.V., Mort M., Phillips A.D., Shiel J.A., Thomas N.S.T., Abeysinghe S., Krawczak M., Cooper D.N. Human Gene Mutation Database (HGMD): 2003 update. Hum. Mutat., 2003; 21: 577–581. doi:10.1002/humu.10212
8. Richards S., Aziz N., Bale S., Bick D., Das S., GastierFoster J., Grody W.W., Hegde M., Lyon E., Spector E., Voelkerding K., Rehm H.L., ACMG Laboratory Quality Assurance Committee. Standards and guidelines for the interpretation of sequence variants: a joint consensus recommendation of the American College of Medical Genetics and Genomics and the Association for Molecular Pathology. Genet. Med., 2015; 17 (5): 405–424. doi:10.1038/gim.2015.30
9. Thanabalasingham G., Pal A., Selwood M.P., Dudley C., Fisher K., Bingley P.J., Ellard S., Farmer A.J., McCarthy M.I., Owen K.R. Systematic assessment of etiology in adults with a clinical diagnosis of youngonset type 2 diabetes is a successful strategy for identifying maturity-onset diabetes of the young. Diabetes Care, 2012; 35: 1206–1212. doi:10.2337/dc11-1243
10. Odom D.T., Zizlsperger N., Gordon D.B., Bell G.W., Rinaldi N.J., Murray H.L., Volkert T.L., Schreiber J., Rolfe P.A., Gifford D.K., Fraenkel E., Bell G.I., Young R.A. Control of pancreas and liver gene expression by HNF transcription factors. Science, 2004; 303 (5662): 1378–1381. doi:10.1126/science.1089769
11. Hansen S.K., Parrizas M., Jensen M.L., Pruhova S., Ek J., Boj S.F., Johansen A., Maestro M.A., Rivera F., Eiberg H. Genetic evidence that HNF-1alphadependent transcriptional control of HNF-4alpha is essential for human pancreatic beta cell function. J. Clin. Invest., 2002; 110: 827–833. doi:10.1172/JCI15085
12. Kyithar M.P., Bonner C., Bacon S., Kilbride S.M., Schmid J., Graf R., Prehn J.H., Byrne M.M. Effects of hepatocyte nuclear factor-1A and -4A on pancreatic stone protein/regenerating protein and C-reactive protein gene expression: implications for maturity-onset diabetes of the young. J. Transl. Med., 2013; 11: 156. doi:10.1186/1479-5876-11-156
13. Yin L., Ma H., Ge X., Edwards P.A., Zhang Y. Hepatic hepatocyte nuclear factor 4alpha is essential for maintaining triglyceride and cholesterol homeostasis. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2011; 31 (2): 328– 336. doi:10.1161/ATVBAHA.110.217828
14. Yamagata K. Roles of HNF1α and HNF4α in pancreatic β-cells: lessons from a monogenic form of diabetes (MODY). Vitam. Horm., 2014; 95: 407–423. doi:10.1016/B978-0-12-800174-5.00016-8
15. Hayhurst G.P., Lee Y.H., Lambert G., Ward J.M., Gonzalez F.J. Hepatocyte nuclear factor 4alpha (nuclear receptor 2A1) is essential for maintenance of hepatic gene expression and lipid homeostasis. Mol. Cell. Biol., 2001; 21 (4): 1393–1403. doi:10.1128/MCB.21.4.1393-1403.2001
16. Hadzopoulou-Cladaras M., Kistanova E., Evagelopoulou C., Zeng S., Cladaras C., Ladias J.A. Functional domains of the nuclear receptor hepatocyte nuclear factor 4. J. Biol. Chem., 1997; 272 (1): 539–550. doi:10.1074/jbc.272.1.539
17. Weissglas-Volkov D., Huertas-Vazquez A., Suviolahti E., Lee J., Plaisier C., Canizales-Quinteros S., Tusie-Luna T., Aguilar-Salinas C., Taskinen M.R., Pajukanta P. Common hepatic nuclear factor-4alpha variants are associated with high serum lipid levels and the metabolic syndrome. Diabetes, 2006; 55 (7): 1970–1977. doi:10.2337/db06-0035
18. Pelletier L., Rebouissou S., Vignjevic D., BioulacSage P., Zucman-Rossi J. HNF1α inhibition triggers epithelial-mesenchymal transition in human liver cancer cell lines. BMC Cancer. 2011; 5: 11: 427. doi:10.1186/1471-2407-11-427
19. Schrem H., Klempnauer J., Borlak J. Liver-enriched transcription factors in liver function and development. Part I: the hepatocyte nuclear factor network and liver-specific gene expression. Pharmacol. Rev., 2002; 54 (1): 129–158. doi:10.1124/pr.54.1.129
20. Tan J., Xu J., Wei G., Zhang L., Sun L., Wang G., Li F., Jiang F. HNF1α controls liver lipid metabolism and insulin resistance via negatively regulating the SOCS-3-STAT3 signaling pathway. J. Diabetes Res., 2019; 15; 2019: 5483946. doi:10.1155/2019/5483946
21. St-Jean M., Boudreau F., Carpentier A.C., Hivert M.F. HNF1α defect influences post-prandial lipid regulation. PLoS One, 2017; 12 (5): e0177110. doi:10.1371/journal.pone.0177110
22. Ekholm E., Nilsson R., Groop L., Pramfalk C. Alterations in bile acid synthesis in carriers of hepatocyte nuclear factor 1α mutations. J. Intern. Med., 2013; 274 (3): 263–272. doi:10.1111/joim.12082
23. Liu F., Zhu X., Jiang X., Li S., Lv Y. Transcriptional control by HNF-1: Emerging evidence showing its role in lipid metabolism and lipid metabolism disorders. Genes Diseases, 2021. [epub ahead of print]. doi:10.1016/j.gendis.2021.06.010
24. Hu M., Huang X., Han X., Ji L. Loss of HNF1α function contributes to hepatocyte proliferation and abnormal cholesterol metabolism via downregulating miR-122: A novel mechanism of MODY3. Diabetes Metab. Syndr. Obes., 2020; 13: 627–639. doi:10.2147/DMSO.S236915
25. Huang X., Gong S., Ma Y., Cai X., Zhou L., Luo Y., Li M., Liu W., Zhang S., Zhang X., Ren Q., Zhu Y., Zhou X., Zhang R., Chen L., Gao X., Zhang F., Wang Y., Han X., Ji L. Lower circulating miR-122 level in patients with HNF1A variant-induced diabetes compared with type 2 diabetes. J. Diabetes Res., 2018; 2018: 7842064. doi:10.1155/2018/7842064
26. Mendel D.B., Hansen L.P., Graves M.K., Conley P.B., Crabtree G.R. HNF-1 alpha and HNF-1 beta (vHNF-1) share dimerization and homeo domains, but not activation domains, and form heterodimers in vitro. Genes Dev., 1991; 5 (6): 1042–1056. doi:10.1101/gad.5.6.1042
Рецензия
Для цитирования:
Иванощук Д.Е., Овсянникова А.К., Михайлова С.В., Шахтшнейдер Е.В., Валеев Э.С., Рымар О.Д., Орлов П.С., Воевода М.И. Варианты генов HNF4A и HNF1A у пациентов с нарушениями метаболизма глюкозы и дислипидемией. Атеросклероз. 2021;17(4):11-19. https://doi.org/10.52727/2078-256X-2021-17-4-11-19
For citation:
Ivanoshchuk D.E., Ovsyannikova A.K., Mikhailova S.V., Shakhtshneider E.V., Valeev E.S., Rymar O.D., Orlov P.S., Voevoda M.I. Variants of the HNF4A and HNF1A genes in patients with impaired glucose metabolism and dyslipidemia. Ateroscleroz. 2021;17(4):11-19. (In Russ.) https://doi.org/10.52727/2078-256X-2021-17-4-11-19